细胞怎么做成石蜡切片

kuaidi.ping-jia.net  作者:佚名   更新日期:2024-07-01
如何制作共聚焦显微镜的细胞切片

如何制作共聚焦显微镜的细胞切片
石蜡切片法 :
石蜡切片法是以石蜡作包埋剂,用旋转切片机将材料切成薄片,经一系列处理制成永久制片的方法.在研究植物的细胞,组织,胚胎以及形态等方面石蜡切片法是最理想的制片方法.
石蜡切片法的一般流程为:取材→固定→抽气→洗涤→脱水→透明→浸蜡→包埋→修块→切片→粘片→染色→封片.
取材
用锋利的刀片切取新鲜的植物材料,选定适宜的材料,立即固定.
取材的注意事项如下:
(1)取材料要新鲜.动作要迅速,以免挤压损坏组织;取病理材料时,应设置对照材料.
(2)所取材料大小要适当:根和茎一般直径≤5mm,切取成5-10mm小段;叶片一般取过中脉处,切成2-5mm宽,5-8mm长.在切材料时,必须注意刀片与中轴成直角,两切面平行,否则制成的切片细胞是斜的. 雌,雄蕊一般不需分割.
(3)取材时间可根据切片要求有所区别.如:在进行植物发育的研究过程时,需要找到细胞分裂相,一般在晴天的早晨9:00-10:00时取材,此时植物细胞分裂活动较明显.
(4)取材不易过老,否则制片有难度(过老的材料须在滑走切片机上进行);对纵切的材料适当多取材,如根尖,茎尖等,因为切到材料正中的概率较低.
(二)固定
将已切好的材料尽快地浸入相当于材料10-15倍体积的固定液中.借助固定液的作用,使细胞的新陈代谢瞬时停止,并保持细胞或组织的形态构造及其内含物的状态不发生变化.从而达到使组织变硬从而便于切片,增强内含物的折光度,令细胞易于着色的目的,同时具有防腐作用.以新鲜配制固定液效果较好.固定的时间依材料的种类,性质,大小等而定.材料固定完毕,保存于加盖的容器内,贴上标签.
良好的固定剂,应是穿透力强,使细胞立刻致死,原生质全部凝固;不发生任何变形,增强折光率,并且不妨碍染色.
常用固定液:
简单固定液 以一种化学药品配制的固定液.

用于光镜观察的石蜡切片厚度一般是5~10μm。
活的细胞或组织多为无色透明,各种组织间和细胞内各种结构之间均缺乏反差,在一般光镜下不易清楚区别出;组织离开机体后很快就会死亡和产生组织腐败,失去原有正常结构。
因此,组织要经固定、石蜡包埋、切片及染色等步骤以免细胞组织死亡,而能清晰辨认其形态结构。





扩展资料
优点:

1、组织细胞形态清晰

2、切片可长期保存,供教学、科研及病理诊断及复察,并可利用蜡块作其他项目的回顾性研究。

3、可以切(2~3微米)的薄片,片子薄而均匀,无皱褶。
缺点:

1、石蜡制片程序及环节繁多,需数日才能完成1个周期。

2、制片过程中很易造成组织内抗原性的丧失,在用于免疫组化染色时影响结果的敏感性。

细胞爬片和冰冻切片,石蜡切片有哪些区别
1.冰冻切片
是免疫组织化学染色中最常用的一种切片方法.其最突出的优点是能够较完好地保存多种抗原的免疫活性,尤其是细胞表面抗原更应采用冰冻切片.新鲜的组织及已固定的组织均可作冰冻切片.
冰冻时,组织中水份易形成冰晶,往往影响抗原定位.一般认为冰晶少而大时,影响较小,冰晶小而多时,对组织结构损害较大,在含水量较多的组织中上述现象更易发生.冰晶的大小与其生长速率成正比,而与成核率(形成速率)成反比,即冰晶形成的数量愈多则愈小,对组织结构影响愈严重.因此,应尽量降低冰晶的数量.fish认为冰冻开始时,冰晶成核率较慢,以后逐渐增加,其临界温度为-33.c,从-30.c降至-43.c之间,成核率急剧增加达1018,然后再减慢.基于上述理论可采取以下措施减少冰晶的形成
2.石蜡切片
其优点是组织结构保存良好,在病理和回顾性研究中有较大的实用价值,能切连续薄片,组织结构清晰,抗原定位准确.用于免疫组化技术的石蜡切片制备与常规制片略有不同:①脱水、透明等过程应在4℃.c下进行,以尽量减少组织抗原的损失.②组织块大小应限于2cm×1.5cm×0.2cm,使组织充分脱水、透明、浸蜡.③浸蜡、包埋过程中,石蜡应保持在60℃以下,以溶点低的软蜡最好(即低温石蜡包埋).

制作石蜡切片法包括取材、固定、洗涤和脱水、透明、浸蜡、包埋、切片与粘片、脱蜡、染色、脱
水、透明、封片等步骤,你具体哪一步不会啊??

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